hrcak mascot   Srce   HID

Pregledni rad
https://doi.org/10.26800/LV-142-5-6-30

Utjecaj primjene različitih tehnika anestezije na imunosni odgovor organizma: pregled literature

Miroslav Župčić ; Klinika za anesteziologiju, intenzivnu medicinu i liječenje boli, Medicinski fakultet Sveučilišta u Rijeci, Klinički bolnički centar Rijeka
Sandra Graf Župčić ; Katedra za fiziologiju, imunologiju i patofiziologiju, Medicinski fakultet Sveučilišta u Rijeci
Tatjana Šimurina ; Medicinski fakultet Sveučilišta Josipa Jurja Strossmayera u Osijeku, Odjel za anesteziologiju i intenzivnu medicinu, Opća bolnica Zadar 6 Odjel za zdravstvene studije, Sveučilište u Zadru
Viktor Đuzel ; Sveučilišne bolnice Barking, Havering i Redbridge, NHS Trust, London, Ujedinjeno Kraljevstvo
Igor Grubješić ; Klinika za anesteziologiju, intenzivnu medicinu i liječenje boli, Medicinski fakultet Sveučilišta u Rijeci, Klinički bolnički centar Rijeka
Dinko Tonković ; Klinika za anesteziologiju, reanimatologiju i intenzivno liječenje, Medicinski fakultet Sveučilišta u Zagrebu, Klinički bolnički centar Zagreb 9 Medicinski fakultet Sveučilišta u Zagrebu
Livija Šakić ; Klinika za anesteziologiju, reanimatologiju i intenzivnu medicinu, Klinička bolnica Sveti Duh, Zagreb
Ivana Šutić ; Katedra za obiteljsku medicinu, Medicinski fakultet Sveučilišta u Rijeci
Višnja Ivančan ; 8 Klinika za anesteziologiju, reanimatologiju i intenzivno liječenje, Medicinski fakultet Sveučilišta u Zagrebu, Klinički bolnički centar Zagreb 9 Medicinski fakultet Sveučilišta u Zagrebu
Stjepan Barišin ; Medicinski fakultet Sveučilišta Josipa Jurja Strossmayera u Osijeku, Klinika za anesteziologiju, reanimatologiju i intenzivnu medicinu, Klinička bolnica Dubrava, Referentni centar Ministarstva zdravstva za hemodinamski nadzor u intenzivnom liječenju kirurških bolesnika, Zagreb

Puni tekst: hrvatski, pdf (239 KB) str. 170-175 preuzimanja: 72* citiraj
APA 6th Edition
Župčić, M., Graf Župčić, S., Šimurina, T., Đuzel, V., Grubješić, I., Tonković, D., ... Barišin, S. (2020). Utjecaj primjene različitih tehnika anestezije na imunosni odgovor organizma: pregled literature. Liječnički vjesnik, 142 (5-6), 170-175. https://doi.org/10.26800/LV-142-5-6-30
MLA 8th Edition
Župčić, Miroslav, et al. "Utjecaj primjene različitih tehnika anestezije na imunosni odgovor organizma: pregled literature." Liječnički vjesnik, vol. 142, br. 5-6, 2020, str. 170-175. https://doi.org/10.26800/LV-142-5-6-30. Citirano 28.01.2021.
Chicago 17th Edition
Župčić, Miroslav, Sandra Graf Župčić, Tatjana Šimurina, Viktor Đuzel, Igor Grubješić, Dinko Tonković, Livija Šakić, Ivana Šutić, Višnja Ivančan i Stjepan Barišin. "Utjecaj primjene različitih tehnika anestezije na imunosni odgovor organizma: pregled literature." Liječnički vjesnik 142, br. 5-6 (2020): 170-175. https://doi.org/10.26800/LV-142-5-6-30
Harvard
Župčić, M., et al. (2020). 'Utjecaj primjene različitih tehnika anestezije na imunosni odgovor organizma: pregled literature', Liječnički vjesnik, 142(5-6), str. 170-175. https://doi.org/10.26800/LV-142-5-6-30
Vancouver
Župčić M, Graf Župčić S, Šimurina T, Đuzel V, Grubješić I, Tonković D i sur. Utjecaj primjene različitih tehnika anestezije na imunosni odgovor organizma: pregled literature. Liječnički vjesnik [Internet]. 2020 [pristupljeno 28.01.2021.];142(5-6):170-175. https://doi.org/10.26800/LV-142-5-6-30
IEEE
M. Župčić, et al., "Utjecaj primjene različitih tehnika anestezije na imunosni odgovor organizma: pregled literature", Liječnički vjesnik, vol.142, br. 5-6, str. 170-175, 2020. [Online]. https://doi.org/10.26800/LV-142-5-6-30

Rad u XML formatu

Sažetak
Imunosni sustav uključuje specifičnu i nespecifičnu imunost. Promjene imunosnog odgovora u perioperativnom razdoblju posredovane su ozljedom tkiva, strahom, lijekovima, hipotermijom, boli, transfuzijom
krvi, hiperglikemijom, infekcijom i povećanim stresom. Anestezija može utjecati na stresni odgovor središnjom modulacijom (opća anestezija), aferentnom blokadom (regionalna anestezija) ili interakcijom s endokrinim sustavom. Također, izbor anestezioloških tehnika može imati mnogo šire značenje svojim utjecajem na karcinomske stanice i njihovo metastaziranje. Ciljevi ovoga preglednog članka bili su istražiti učinke regionalne anestezije u usporedbi s općom (intravenskom i inhalacijskom) anestezijom na promjenu kirurškog odgovora na stres, progresiju maligne bolesti i poslijeoperacijsko funkcioniranje organa. Dokazano je da primjena općih anestetika ima supresivni učinak na staničnu i humoralnu imunost djelujući na funkciju imunokompetentnih stanica te gensku ekspresiju upalnih medijatora i njihovu sekreciju. Opioidni analgetici ili njihov način primjene pokazuju drukčiji efekt na imunosni sustav: imunosupresivni, imunostimulacijski ili oba. Nasuprot tomu, primjena lokalnih anestetika djelotvorna je u liječenju akutne i kronične upale jer ti anestetici inaktiviraju upalne procese na različitim
razinama djelujući na monocitno-makrofagni sustav, smanjuju proupalne funkcije poput stvaranja kisikovih metabolita, oslobađanja histamina, interleukina (IL-1α) i leukotrijena. Da bi se izbjegla ova imunosna reakcija, preporučuje se primjena regionalne analgezije koja je nadmoćna naspram drugim analgetskim metodama te reducira količinu poslijeoperacijskog krvarenja. Upravo zbog tih važnih prednosti danas je regionalna analgezija u širokoj primjeni kod kirurških zahvata na onkološkim bolesnicima.

Ključne riječi
HUMORALNA IMUNOST- djelovanje lijeka; STANIČNA IMUNOST- djelovanje lijeka; LOKALNI ANESTETICI – farmakologija; OPIOIDNI ANALGETICI – farmakologija; OPĆA ANESTEZIJA; REGIONALNA ANESTEZIJA; ANALGEZIJA; TUMORI – imunologija; FIZIOLOŠKI STRES – imunologija; POSLIJEOPERACIJSKO KRVARENJE

Hrčak ID: 240271

URI
https://hrcak.srce.hr/240271

▼ Article Information



Promjene imunosnog odgovora u perioperativnom razdoblju posredovane su ozljedom tkiva, strahom, lijekovima, hipotermijom, boli, transfuzijom krvi, hiperglikemijom, infekcijom i povećanim stresom. Najvažniji utjecaj tih čimbenika na imunosni sustav jest suprimiranje adaptivne imunosne reakcije ili pojačavanje imunosnog odgovora. (1, 2) Veliki kirurški zahvati ili traume organizma (opekline, politraume) često mogu dovesti do znatnog imunosupresivnog odgovora koji će uzrokovati produljenje cijeljenja rane i komplicirane infekcije. (3) Anestezija može utjecati na stresni odgovor središnjom modulacijom (opća anestezija), aferentnom blokadom (regionalna anestezija) ili interakcijom s endokrinim sustavom (etomidat). Regionalna anestezija može samostalno ili u kombinaciji s općom anestezijom znatno suprimirati endokrini odgovor organizma na stres. (4) Također, izbor anestezioloških tehnika može imati mnogo šire značenje svojim utjecajem na karcinomske stanice i njihovo metastaziranje. Ciljevi ovoga preglednog članka bili su istražiti učinke regionalne anestezije u usporedbi s općom (intravenskom i inhalacijskom) anestezijom na promjenu kirurškog odgovora na stres, progresiju maligne bolesti i poslijeoperacijsko funkcioniranje organa. (5)

Prirođena i stečena imunost

Imunosni sustav uključuje specifičnu i nespecifičnu imunost. Prirođeni imunosni odgovor nespecifična je imunosna obrana prisutna pri rođenju. (5) Prva je linija obrane i odnosi se na zaštitne mehanizme koji su prisutni čak i prije infekcije. Njezine glavne komponente jesu epitelne membrane (koje blokiraju ulaz patogena), fagocitne stanice (neutrofili i makrofagi), dendritičke stanice, ubilačke (engl. natural killer – NK) stanice i nekoliko proteina plazme uključujući komplementni sustav. Najvažnija stanična reakcija prirođene imunosti jest upala – proces posredovan dendritičkim i NK-stanicama, pri čemu se regrutiraju i aktiviraju fagocitne stanice kako bi uklonile uljeza. (5) Adaptivni imunitet, koji se naziva i specifična ili stečena imunost, sastoji se od mehanizama što su nastali prepoznavanjem specifičnih antigena patogena. Specifični imunosni sustav posredovan je primarno limfocitima, a njegova funkcija može se svrstati u dva tipa: humoralni imunitet, posredovan B-limfocitima i njihovim antitijelima, te stanični imunitet, posredovan uglavnom T-limfocitima i njihovim citokinima, koji imaju važnu ulogu pri aktivaciji imunosnih stanica, regulaciji i komunikaciji. (5) Osim svoje uloge u obrani organizma protiv tumorskih stanica i infektivnih uzročnika, upalni je odgovor ključan za obnavljanje tkiva nakon kirurških ili nekih drugih ozljeda. Poremećaj ovog procesa može povećati osjetljivost na infekcije, ubrzati rast stanica karcinoma i njihovo metastaziranje. (5, 6)

Utjecaj opće anestezije na imunosni odgovor

Anestetici imaju supresivni učinak na staničnu i humoralnu imunost djelujući na funkciju imunokompetentnih stanica te gensku ekspresiju upalnih medijatora i njihovu sekreciju. (7) Kod malignih bolesti imunosupresija potencirana anesteticima (disfunkcija NK-stanica i limfocita) može ubrzati rast i metastaziranje rezidualnih malignih stanica te time pogoršati prognozu. Protuupalno djelovanje anestetika može biti i korisno u stanjima koja obuhvaćaju ishemiju, sindrom sustavnog upalnog odgovora (engl. systemic inflammatory response syndrome – SIRS) i reperfuzijsku ozljedu. (8) Procjene djelovanja anestetika na imunosni sustav bolesnika prilično su ograničene jer imaju više varijabla kao što su duljina i vrsta kirurškog zahvata te komplikacije povezane s njima. (9)

Intravenski anestetici

Dokazano je da primjena tiopentala i ketamina kod štakora suprimira NK-staničnu aktivnost i razinu NK-stanica u usporedbi s kontrolnim skupinama. (10) Također, dokazano je da propofol ima inhibicijski učinak na monocite, neutrofile i makrofage u prirođenoj imunosti, ali ne djeluje na limfocite i NK-stanice. (11) Propofol ima antioksidativno i protuupalno djelovanje inhibirajući prirođenu imunost. (12) Istraživanja u kritičnih bolesnika pokazala su da propofol ne utječe znatno na neutrofilnu funkciju. (13) Smanjuje sekreciju interleukina 8 (IL-8) iz neutrofila stimuliranih lipopolisaharidom, dok unutarstanična razina IL-8 i glasnička ribonukleinska kiselina (mRNK) (engl. messenger ribonucleic acid – mRNA) ostaju nepromijenjene, što upućuje na to da propofol djeluje na posttranslacijskoj razini (regulacija ekspresije eukariotskih gena), a ne na mRNK. (14, 15) Chen i suradnici (16) u svojem su istraživanju dokazali da je stvaranje proupalnih citokina – čimbenika tumorske nekroze alfa (engl. tumor necrosis factor alpha – TNF-α), IL-1β i IL-6 – u makrofaga aktiviranih lipopolisaharidom inhibirano na pretranslacijskoj razini nakon primjene propofola. Primjena propofola i fentanila pri anesteziji kod ljudi pokazuje izrazito smanjenje broja cirkulirajućih NK-stanica, dok u studijama in vitro nema utjecaja. (17)

Opioidi

Tradicionalan pojam vezan za opioide jest imunosupresija. Nedavna istraživanja pokazuju komplicirani utjecaj opioidnih receptora na imunosnu funkciju putem različitih mehanizama. Različiti opioidi ili njihov način primjene pokazuju drukčiji efekt na imunosni sustav: imunosupresivni, imunostimulacijski ili oba. (18) Imunomodulacija inducirana opioidom posredovana je opiodnim receptorima (δ, κ, μ i σ) te aktivacijom autonomnoga živčanog sustava i osi hipotalamus-hipofiza-nadbubrežna žlijezda. (19) Aktivacija opioidnih receptora potiče produkciju adrenokortikotropnog hormona (ACTH) iz hipofize, što potiče stvaranje glukokortikoida koji suprimiraju sve imunosne stanice osim regulacijskih T-limfocita. (20) NK-stanice i neutrofili imaju receptore δ i μ, dok monociti, makrofagi, B-limfociti i T-limfociti imaju receptore μ, δ i κ. (18) Morfij inhibira diferencijaciju i proliferaciju makrofaga, a suprimira funkciju neutrofila: fagocitozu, oksidaciju i prikazivanje receptora komplementa. (21) Smanjuju se aktivnost limfocita B i T te aktivnost NK-stanica. (22, 23) Također, morfij pokazuje imunosupresivni učinak inhibicijom transkripcije IL-2 u aktiviranim T-limfocitima te inhibira aktivnost citotoksičnih limfocita CD4+ i CD8+. (24) Postoji dosta radova in vitro koji prikazuju metastatski ili inhibicijski učinak morfija na proliferativni potencijal tumorskih stanica. (25, 26) Na modelu in vivo (štakori) dokazano je smanjeno preživljenje nakon primjene morfija pri karcinomu dojke. Dokazano je i da morfij potiče aktivaciju i degranulaciju mastocita, limfangiogenezu te povisuje razinu upalnih citokina, supstancije P i triptaze. (27) Rast tumora posredovan je ponajviše proliferacijom tumorskih stanica i angiogenezom, koje su nužne za metastaziranje. (28) Za razliku od morfija, sintetički opioidi poput fentanila, sufentanila i alfentanila nemaju imunosupresivni učinak zbog manje interakcije s opioidnim receptorima. (29) Sacerdote i suradnici otkrili su pojačanu aktivnost NK-stanica nakon perioperativne primjene tramadola kod bolesnica s tumorom maternice. (30)

Inhalacijski anestetici

Dokazano je da imaju inhibicijski učinak na aktivnost NK-stanica i funkciju neutrofila te da smanjuju limfocitnu proliferaciju i oslobađanje citokina u mononuklearnim stanicama. (31) Inhibirajući funkciju neutrofila, oslabljuju njihovu sposobnost za aktivaciju upalnog odgovora, ali time mogu osigurati i pozitivan utjecaj pri ishemijsko-reperfuzijskoj ozljedi smanjenjem stvaranja kisikovih radikala, čime se smanjuje prianjanje neutrofila na endotel krvnih žila, npr., kod ishemijskoga srčanog mišića. (32) Sevofluran suprimira izlučivanje proupalnih citokina, IL-6 i IL-8, dok inhalacija izoflurana smanjuje izlučivanje proupalnog citokina IL-1β. (33) Noviji radovi pokazuju i neuroprotektivni učinak sevoflurana na ishemijsko-reperfuzijsku ozljedu mozga (engl. cerebral ischemia/reperfusion injury – CI/RI) u uvjetima in vitro i in vivo, najvjerojatnije inhibicijom mikroRNK (engl. microRNA miR-181) i stimulirajući inhibitor apoptotičnog proteina vezanog X-kromosomom (engl. X-chromosome-linked inhibitor of apoptosis protein – XIAP). (34) Drugi inhalacijski anestetici poput enflurana i izoflurana suprimiraju oslobađanje TNF-α i IL-1β te inhibiraju limfocitnu funkciju. (35)

Dušični oksid

Dokazan je nepovoljan učinak nakon primjene dušičnog oksida. Dušični oksid deprimira neutrofilnu kemotaksiju i remeti proces sinteze deoksiribonukleinske kiseline (DNK; engl. deoxyribonucleic acid – DNA). Također, primjena dušičnog oksida povezana je s depresivnim učinkom na funkciju neutrofila i sa smanjenom produkcijom mononuklearnih stanica. (36) Istraživanja na miševima dokazala su povezanost pojačane izloženosti dušičnom oksidu s nastankom metastaza u jetri i plućima. (37)

Utjecaj lokalnih anestetika i regionalne anestezije na imunosni odgovor

Lokalni anestetici

Mehanizam djelovanja lokalnih anestetika ponajviše se bazira na interakciji s natrijevim kanalima u membrani živaca. Natrijevi kanali sadržavaju jednu veću alfa (α) podjedinicu i dvije manje beta (β) podjedinice. Alfa-podjedinice na mjestu vezanja lokalnog anestetika imaju četiri homologne jedinice gdje je svaka povezana sa šest transmembranskih uzvojnica. (38) Povećanom frekvencijom podražaja živčanih vlakana otvaraju se natrijevi kanali te omogućuju ulazak natriju i lokalnom anestetiku. Lokalni anestetici reverzibilnim učinkom sprječavaju depolarizaciju živčane membrane tako što blokiraju protok natrijevih iona, ne djelujući pritom previše na kalijeve ione. Stoga, što je frekvencija podražaja dulja, to su veće mogućnost vezanja lokalnog anestetika na unutrašnjost ionskog kanala i njegova inaktivacija. (39) Lokalni su se anestetici pokazali djelotvorni u liječenju akutne i kronične upale jer inaktiviraju upalne procese na različitim razinama. Djeluju na monocitno-makrofagni sustav, smanjuju proupalne funkcije poput stvaranja kisikovih metabolita, oslobađanja histamina, IL-1α i leukotrijena. (40) Primjena lidokaina pokazuje antitumorski učinak, a primjena ropivakaina supresivni učinak na rast tumorskih stanica. (41, 42) Mogući antiproliferativni učinak lidokaina na tumore izražen je putem receptora epidermalnog faktora rasta (engl. epidermal growth factor receptor – EGFR). (41) Deegan i suradnici dokazali su povoljan učinak levobupivakaina na poslijeoperacijsku razinu IL-10 kod bolesnica s karcinomom dojke. (43) Učinak IL-10 na rast tumora kompleksan je i nije potpuno razjašnjen. Svojim djelovanjem znatno inhibira produkciju proupalnih citokina, uključujući IL-1, IL-8, IL-6, TNF-α i matriks metaloproteinaze (engl. matrix metalloproteinases – MMPs), te pojačava učinak NK-stanica. (43)

Regionalna anestezija i analgezija

Primjena regionalne anestezije s lokalnim anestetikom tijekom kirurškog zahvata rezultira smanjenjem neuroendokrinog odgovora, a time i sprječava imunosupresiju. Osim toga, neuroaksijalna, regionalna anestezija i analgezija osiguravaju znatno smanjenje poslijeoperacijske boli, krvarenja, intravenske primjene opioida i inhalacijskih anestetika. (44, 45) Ahlers i suradnici u svojem su istraživanju dokazali da intraoperativna primjena epiduralne analgezije u kombinaciji s općom anestezijom rezultira nižim razinama kortizola i adrenalina, a višim razinama interferona gama (IFN-γ) i IL-10 naspram primjeni samo opće anestezije. (46) Primjena regionalne analgezije (paravertebralnog bloka) u kombinaciji s propofolom kod karcinoma dojke ima inhibirajući učinak na poslijeoperacijski plazmatski neutrofilno-limfocitni porast naspram primjeni opće anestezije. (47) Razina T-pomoćničkih limfocita (Th) nakon primjene regionalne anestezije pokazuje znatno više poslijeoperacijske vrijednosti u usporedbi s općom anestezijom. (46) Regionalna anestezija znatno utječe i na povišenje poslijeoperacijskih vrijednosti TNF-β i sniženje krvožilnog endotelnog faktora rasta (engl. vascular endothelial growth factor – VEGF), koji su vrlo važni pokazatelji upale. (48) Neka su istraživanja otkrila da dodatak epiduralne anestezije općoj anesteziji održavanoj sevofluranom za vrijeme laparotomije odgađa supresiju jetrenih mononuklearnih stanica, održava Th1/Th2-citokinsku ravnotežu i NK-staničnu funkciju, rezultirajući redukcijom tumorskih metastaza. (49) Druga istraživanja govore da su imunokompetentne stanice osjetljivije na djelovanje inhalacijskih anestetika nego propofola i sintetskih opioida (fentanila). (50, 51) Pérez-González i suradnici u svojem preglednom istraživanju nisu mogli naći dovoljan broj dokaza koji bi poduprli ili odbacili mogućnost da primjena paravertebralnog bloka poboljšava preživljenje ili smanjuje metastaziranje kod karcinoma dojke, ali su dokazali da njegova primjena u kombinaciji s propofolom smanjuje perioperativni upalni odgovor (IL-6, MMP-3 i MMP-9), sprječava imunosnu supresiju i smanjuje angiogenezu. (51) Sessler i suradnici nakon svojega su jedanaestogodišnjeg istraživanja (2007. – 2018.) dokazali da primjena regionalne anestezije – analgezije (paravertebralnog bloka i propofola) nije smanjila poslijeoperacijski recidiv karcinoma dojke naspram općoj anesteziji (inhalacijski anestetici – opioidi). (52) Stoga možemo reći da primjena opće anestezije s propofolom i fentanilom, kombinirana s regionalnom analgezijom, može biti optimalna za imunokompromitirane bolesnike, dok su inhalacijski anestetici korisni kod kardijalne kirurgije (premosnice) ili ishemijsko-reperfuzijske ozljede. (53)

Zaključak

Primjena općih anestetika i morfija suprimira staničnu i humoralnu imunost. Da bi se izbjegla ova imunosna reakcija, preporučuje se primjena regionalne analgezije koja je superiorna naspram drugim analgetskim metodama te reducira količinu poslijeoperacijskog krvarenja. (44, 45) Imunosupresivni učinci regionalne anestezije i analgezije manji su od imunosupresivnih učinaka intravenskih opioida ili opće anestezije. Upravo zbog tih važnih prednosti danas je regionalna analgezija u širokoj primjeni kod kirurških zahvata na onkološkim bolesnicima. (43, 46, 47) S obzirom na to da još nema dovoljnog broja dokaza poput smanjenja metastaza, recidiva karcinomske bolesti i dugoročne stope preživljavanja, koji bi upućivali na prednost primjene regionalne anestezije i/ili analgezije u poslijeoperacijskom preživljenju onkoloških bolesnika, potrebno je provesti daljnja klinička istraživanja.

LITERATURA

1 

Homburger JA, Meiler SE. Anesthesia drugs, immunity and long-term outcome. Curr Opin Anaesthesiol. 2006;19:423–8. DOI: http://dx.doi.org/10.1097/01.aco.0000236143.61593.14 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16829725

2 

Kennedy BC, Hall BM. Neuroendocrine and inflammatory aspects of surgery: do they affect outcome? Acta Anaesthesiol Belg. 1998;50:205–9. PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10603996

3 

Elenkov IJ, Chrousos GP. Stress Hormones, Th1/Th2 patterns, Pro/Anti-inflammatory Cytokines and Susceptibility to Disease. Trends Endocrinol Metab. 1999;10:359–68. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/S1043-2760(99)00188-5 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10511695

4 

Adams HA, Hempelmann G. The endocrine stress reaction in anesthesia and surgery–origin and significance. Anasthesiol Intensivmed Notfallmed Schmerzther. 1991;26:294–305. DOI: http://dx.doi.org/10.1055/s-2007-1000588 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1751650

5 

Iwasaki M, Edmondson M, Sakamoto A, Ma D. Anesthesia, surgical stress, and “long-term” outcomes. Acta Anaesthesiol Taiwan. 2015;53:99–104. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.aat.2015.07.002 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26235899

6 

Lin WW, Karin M. A cytokine-mediated link between innate immunity, inflammation, and cancer. J Clin Invest. 2007;117:1175–83. DOI: http://dx.doi.org/10.1172/JCI31537 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17476347

7 

Kirkley SA, Cowles J, Pellegrini VD Jr, Harris CM, Boyd AD, Blumberg N. Cytokine secretion after allogeneic or autologous blood transfusion [letter]. Lancet. 1995;345:527. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(95)90627-4 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/7861907

8 

Kurosawa S, Kato M. Anaesthetics, immune cells and immune responses. J Anesth. 2008;22:263–77. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00540-008-0626-2 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18685933

9 

Heller A, Heller S, Blecken S, Urbaschek R, Koch T. Effects of intravenous anesthetics on bacterial elimination in human blood in vitro. Acta Anaesthesiol Scand. 1998;42:518–26. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1399-6576.1998.tb05160.x PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9605366

10 

Melamed R, Bar-Yosef S, Shakhar G, Shakhar K, Ben-Eliyahu S. Suppression of natural killer cell activity and promotion of tumor metastasis by ketamine, thiopental, and halothane, but not by propofol: mediating mechanisms and prophylactic measures. Anesth Analg. 2003;97:1331–9. DOI: http://dx.doi.org/10.1213/01.ANE.0000082995.44040.07 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/14570648

11 

Marik PE. Propofol: an immunomodulating agent. Pharmacotherapy. 2005;25(5 Pt 2):28S–33S. DOI: http://dx.doi.org/10.1592/phco.2005.25.5_Part_2.28S PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15899746

12 

Heine J, Leuwer M, Scheinichen D, Arseniev L, Jaeger K, Piepenbrock S. Flow cytometry evaluation of the in vitro influence of four i.v. anaesthetics on respiratory burst of neutrophils. Br J Anaesth. 1996;77:387–92. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/bja/77.3.387 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8949817

13 

Huettemann E, Jung A, Vogelsang H, Hout N, Sakka SG. Effects of propofol vs methohexital on neutrophil function and immune status in critically ill patients. J Anesth. 2006;20:86–91. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00540-005-0377-2 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16633763

14 

Larsen B, Hoff G, Wilchem W, et al. Effects of intravenous anesthetics on spontaneus and endotoxin-stimulated cytokine response in cultured human whole blood. Anesthesiology. 1998;89:1218–27. DOI: http://dx.doi.org/10.1097/00000542-199811000-00023 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9822011

15 

Chen RM, Wu CH, Chang HC, et al. Propofol supresses macrophage functions and modulates mitochondrial membrane potential and cellular adenosine triphosphate synthesis. Anesthesiology. 2003;98:1178–85. DOI: http://dx.doi.org/10.1097/00000542-200305000-00021 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12717140

16 

Chen RM, Chen TG, Chen TL, et al. Anti-inflammatory and antioxidative effects of propofol on lipopolysaccharide-activated macrophages. Ann N Y Acad Sci. 2005;1042:262–71. DOI: http://dx.doi.org/10.1196/annals.1338.030 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15965071

17 

Brand JM, Frohn C, Luhm J, Kirchner H, Schmucker P. Early alterations in the number of circulating lymphocyte subpopulations end enhanced proinflammatory immune response during opioid-based general anesthesia. Shock. 2003;20:213–7. DOI: http://dx.doi.org/10.1097/00024382-200309000-00003 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12923491

18 

Liang X, Liu R, Chen C, Ji F, Li T. Opioid System Modulates the Immune Function: A Review. Transl Perioper Pain Med. 2016;1:5–13. PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26985446

19 

Flores LR, Dretchen KL, Bayer BM. Potential role of the autonomic nervous system in the immunosupressive effects of the acute morphine administration. Eur J Pharmacol. 1996;318:437–46. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/S0014-2999(96)00788-1 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9016936

20 

Freier DO, Fucks BA. A mechanism of action for morphine induced immunosuppression: corticosteroids mediates morphine induced suppression of NK cell activity. J Pharmacol Exp Ther. 1994;270:1127–33. PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/7932161

21 

Einstein TK, Hilburger ME. Opioid modulation of immune responses: effects on phagocyte and lymphoid cell population. J Neuroimmunol. 1998;83:500–8.

22 

Bryant HU, Bernton EW, Holaday JW. Morphine pellet-induced immunomodulation in mice: temporal relationships. J Pharmacol Exp Ther. 1988;245:913–20. PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/3385646

23 

Yokota T, Uehara K, Nomoto Y. Addition of noradrenaline to intrathecal morphine augments the postoperative suppression of natural killer cell activity. J Anesth. 2004;18:190–5. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00540-004-0247-3 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15290418

24 

Börner C, Warnick B, Smida M, et al. Mechanisms of opioid-mediated inhibition of human T cell receptor signaling. J Immunol. 2009;183:882–9. DOI: http://dx.doi.org/10.4049/jimmunol.0802763 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19561113

25 

Page GG, Ben-Eliyahu S, Yirmiya R, et al. Morphine attenuates surgery-induced enhancement of metastatic colonization in rats. Pain. 1993;54:21–8. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/0304-3959(93)90095-7 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8378099

26 

Lazarczyk M, Matyja E, Lipkowski AW. A comparative study of morphine stimulation and biphalin inhibition of human glioblastoma T98G cell proliferation in vitro. Peptides. 2010;31:1606–12. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.peptides.2010.05.002 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20580757

27 

Nguyen J, Luk K, Vang D, et al. Morphine stimulates cancer progression and mast cell activation and impairs survival in transgenic mice with breast cancer. Br J Anaesth. 2014;113 Suppl 1:i4–13. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/bja/aeu090 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24861561

28 

Carmeliet P, Jain RK. Angiogenesis in cancer and other diseases. Nature. 2000;407:249–57. DOI: http://dx.doi.org/10.1038/35025220 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11001068

29 

Missair A, Cata JP, Votta-Velis G, et al. Impact of perioperative pain management on cancer recurrence: an ASRA/ESRA special article. Reg Anesth Pain Med. 2019;44:13–28. DOI: http://dx.doi.org/10.1136/rapm-2018-000001 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/30640648

30 

Sacerdote P, Bianchi M, Gaspani L, et al. The effects of tramadol and morphine on immune responses and pain after surgery in cancer patients. Anesth Analg. 2000;90:1411–4. DOI: http://dx.doi.org/10.1097/00000539-200006000-00028 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10825330

31 

Desborough JP. The stress response to trauma and surgery. Br J Anaesth. 2000;85:109–17. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/bja/85.1.109 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10927999

32 

Vinten-Johansen J. Involvement of neutrophils in pathogenesis of lethal myocardial reperfusion injury. Cardiovasc Res. 2004;61:481–97. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.cardiores.2003.10.011 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/14962479

33 

Kawamura T, Kadosaki M, Nara N, et al. Effects of sevoflurane on cytokine balance in patients undergoing coronary artery bypass graft surgery. J Cardiothorac Vasc Anesth. 2006;20:503–8. DOI: http://dx.doi.org/10.1053/j.jvca.2006.01.011 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16884979

34 

Zhang Y, Shan Z, Zhao Y, Ai Y. Sevoflurane prevents miR-181a-induced cerebral ischemia/reperfusion injury. Chem Biol Interact. 2019;308:332–8. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.cbi.2019.06.008 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/31170386

35 

Tschaikowsky K, Ritter J, Schroppel K, Kuhn M. Volatile anaesthetics differentially affect immunostimulated expresion of inducible nitric oxide synthase: role of intracellular calcium. Anesthesiology. 2000;92:1093–102. DOI: http://dx.doi.org/10.1097/00000542-200004000-00028 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10754630

36 

Kaye AD, Patel N, Bueno FR, et al. Effect of opiates, anesthetic techniques, and other perioperative factors on surgical cancer patients. Ochsner J. 2014;14:216–28. PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24940132

37 

Shapiro J, Jersky J, Katzav S, Feldman M, Segal S. Anesthetic drugs accelerate the progression of postoperative metastases of mouse tumors. J Clin Invest. 1981;68:678–85. DOI: http://dx.doi.org/10.1172/JCI110303 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/7276167

38 

Wang SY, Barile M, Wang GK. Disparate role of Na(+) channel D2-S6 residues in batrachotoxin and local anesthetic action. Mol Pharmacol. 2001;59:1100–7. DOI: http://dx.doi.org/10.1124/mol.59.5.1100 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11306693

39 

Jukić M. Regionalna anestezija. U: Jukić M, Kogler Majerić V, Husedžinović I, Sekulić A, Žunić J (ur.). Klinička anesteziologija. Zagreb: Medicinska naklada; 2005, str. 360–8.

40 

Sinclair R, Eriksson AS, Gretzer C, et al. Inhibitory effects of amide local anaesthestics on stimulus-induced human leukocyte metabolic activation, LTB4 release and IL-1 secretion in vitro. Acta Anaesthesiol Scand. 1993;37:159–65. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1399-6576.1993.tb03693.x PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8383401

41 

Sakaguchi M, Kuroda Y, Hirose M. The antiproliferative effect of lidocaine on human tongue cancer cells with inhibition of the activity of epidermal growth factor receptor. Anesth Analg. 2006;102:1103–7. DOI: http://dx.doi.org/10.1213/01.ane.0000198330.84341.35 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16551906

42 

Martinsson T. Ropivacaine inhibits serum-induced proliferation of colon adenocarcinoma cells in vitro. J Pharmacol Exp Ther. 1999;288:660–4. PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9918572

43 

Deegan CA, Murray D, Doran P, et al. Anesthetic technique and the cytokine and matrix metalloproteinase response to primary breast cancer surgery. Reg Anesth Pain Med. 2010;35:490–5. DOI: http://dx.doi.org/10.1097/AAP.0b013e3181ef4d05 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20975461

44 

Hong JY, Lim KT. Effect of preemptive epidural analgesia on cytokine response and postoperative pain in laparoscopic radical hysterectomy for cervical cancer. Reg Anesth Pain Med. 2008;33:44–51. DOI: http://dx.doi.org/10.1097/00115550-200801000-00008 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18155056

45 

Capdevila X, Barthelet Y, Biboulet P, Ryckwaert Y, Rubenovitch J, d’Athis F. Effects of perioperative analgesic technique on the surgical outcome and duration of rehabilitation after major knee surgery. Anesthesiology. 1999;91:8–15. DOI: http://dx.doi.org/10.1097/00000542-199907000-00006 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10422923

46 

Ahlers O, et al. Intraoperative thoracic epidural anaesthesia attenuates stress-induced immunosuppression in patients undergoing major abdominal surgery. Br J Anaesth. 2008;101:781–7. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/bja/aen287 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18922851

47 

Ní Eochagáin A, Burns D, Riedel B, Sessler DI, Buggy DJ. The effect of anaesthetic technique during primary breast cancer surgery on neutrophil-lymphocyte ratio, platelet-lymphocyte ratio and return to intended oncological therapy. Anaesthesia. 2018;73:603–11. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/anae.14207 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29457215

48 

Looney M, Doran P, Buggy DJ. Effect of anesthetic technique on serum vascular endothelial growth factor C and transforming growth factor β in women undergoing anesthesia and surgery for breast cancer. Anesthesiology. 2010;113:1118–25. DOI: http://dx.doi.org/10.1097/ALN.0b013e3181f79a69 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20930611

49 

Helmy SA, Wahby MA, El-Nawaway M. The effect of anaesthesia and surgery on plasma cytokine production. Anaesthesia. 1999;54:733–8. DOI: http://dx.doi.org/10.1046/j.1365-2044.1999.00947.x PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10460524

50 

Woo JH, Baik HJ, Kim CH, et al. Effect of propofol and desflurane on immune cell populations in breast cancer patients: a randomized trial. J Korean Med Sci. 2015;30:1503–8. DOI: http://dx.doi.org/10.3346/jkms.2015.30.10.1503 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26425050

51 

Pérez-González O, Cuéllar-Guzmán LF, Soliz J, Cata JP. Impact of Regional Anesthesia on Recurrence, Metastasis, and Immune Response in Breast Cancer Surgery: A Systematic Review of the Literature. Reg Anesth Pain Med. 2017;42:751–6. DOI: http://dx.doi.org/10.1097/AAP.0000000000000662 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/28953508

52 

Sessler DI, Pei L, Huang Y, et al. Breast Cancer Recurrence Collaboration. Recurrence of breast cancer after regional or general anaesthesia: a randomised controlled trial. Lancet. 2019;394:1807–15. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(19)32313-X PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/31645288

53 

Chiari P, Durand M, Desebbe O, et al. Multimodal cardioprotective strategy in cardiac surgery (the ProCCard trial): Study protocol for a multicenter randomized controlled trial. Trials. 2019;20:560. DOI: http://dx.doi.org/10.1186/s13063-019-3638-3 PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/31511041


This display is generated from NISO JATS XML with jats-html.xsl. The XSLT engine is libxslt.

[engleski]

Posjeta: 186 *